Студопедия — Ветеринарный осмотр животных.
Студопедия Главная Случайная страница Обратная связь

Разделы: Автомобили Астрономия Биология География Дом и сад Другие языки Другое Информатика История Культура Литература Логика Математика Медицина Металлургия Механика Образование Охрана труда Педагогика Политика Право Психология Религия Риторика Социология Спорт Строительство Технология Туризм Физика Философия Финансы Химия Черчение Экология Экономика Электроника

Ветеринарный осмотр животных.






При проведении основной и промежуточных диспансеризаций на контроль­ных фермах (дворах, секциях) проводят ветеринарный ос­мотр всех животных.

При поголовном осмотре обращают внимание на общее состояние, упитанность, состояние шерстного покрова, венчи­ка, копытного рога и костяка, реакцию при вставании и т. д. Хорошее общее состояние, живая быстрая реакция на оклик, блестящий шерстный покров, средняя упитанность характер­ны для здоровых животных. Матовость шерстного покрова и глазури копытного рога, заломы рогового башмака, дистро­фия или ожирение, болезненность при вставании, движении, хруст в суставах, провислость спины и слабость костяка являются свидетельством патологии обмена веществ у жи­вотных.

2.7. Клиническое обследование контрольных групп живот­ных.

Для того чтобы иметь представление о клиническом статусе в стаде при проведении основной диспансеризации, осуществляют полное клиническое обследование контроль­ных групп животных. Определяют упитанность, состояние лимфоузлов, частоту сердечных сокращений, характер сердеч­ных тонов, частоту и глубину дыхания, ритм и силу сокраще­ния рубца, состояние печени, костяка, органов движения, вымени и мочеполовых органов. Исследуют предлопаточные лимфоузлы и лимфоузлы коленной складки. При их увеличе­нии животных исследуют на лейкоз в соответствии с сущест­вующей инструкцией.

Состояние сердечной деятельности определяют путем аускультации сердца, устанавливая частоту, силу и ритм сердеч­ных сокращений, усиление, ослабление сердечных тонов, рас­щепление или раздвоение их, шумы сердца и др. При кетозе отмечают преимущественно учащение сердечных сокращений, ослабление, глухость, расщепление, раздвоение сердечных тонов.

Состояние органов дыхания оценивают первоначально по частоте и глубине дыхания, при наличии каких-либо призна­ков патологии проводят дополнительные исследования. Час­тоту дыхания подсчитывают при спокойном состоянии живот­ного. Наличие большого числа животных с учащенным по­верхностным дыханием свидетельствует о патологии обмена, веществ.

На фермах, где отмечают кетоз, хронический ацидоз рубца, учащенное поверхностное дыхание бывает у 20 - 25% животных.

У высокопродуктивных коров нередко констатируют хро­нические бронхиты, очаговые пневмонии, альвеолярную эмфи­зему легких и другие болезни органов дыхания.

Первоначальное представление о состоянии желудочно-кишечного тракта дают результаты исследования рубца. Ча­стоту движений рубца подсчитывают за 2 мин. При установ­лении редких или частых слабых, неритмичных сокращений рубца исследуют книжку, сычуг, сетку, чтобы выявить пер­вичную причину гипотонии, атонии или гипертонии предже-луд'ков. Важно исключить травматический ретикулит, ретикулоперитонит, закупорки книжки и другие первичные забо­левания преджелудков.

Частые случаи гипотонии и атонии преджелудков у коров встречаются при ацидозе рубца, остеодистрофии и гипокобальтозе. Нередко они проявляются при кетозе, а также рез­ком переводе животных с одного вида корма на другой.

Печень животного исследуют пальпацией и перкуссией области печеночного притупления. При значительных патоло­гических процессах в печени область ее притупления увели­чивается в каудальном направлении, доходя до линии седа­лищного бугра до 13-го ребра, и опускается краниовентрально. Увеличение печени встречается преимущественно у живот­ных при высококонцентратном, силосно-бардяном, силосно-жомовом типах кормления.

Для оценки состояния костяка исследуют последние хво­стовые позвонки, ребра, поперечные отростки поясничных позвонков и других костей. В случаях расстройства мине­рального обмена, обеднения костяка солями кальция, фос­фора, магния у животных обнаруживают истончение и расса­сывание последних хвостовых позвонков, ребер, лопатки и других костей. На ребрах, маклоке и других костях устанав­ливают фиброзные утолщения, иногда величиной с кулак, деформацию грудной клетки.

При исследовании органов движения обращают внима­ние на наличие хромоты, состояние суставов, венчика, копы­тец. Частые случаи деформации копытцевого рога, воспале­ния венчика, бурситов, артритов могут быть следствием на­рушения обмена веществ у животных.

При исследовании мочеполовых органов осматривают область подгрудка, нижнюю часть живота и другие участки тела животного с тем, чтобы выявить отеки, определяют чувствительность почек. Осматривают область таза, крупа и вульвы с целью обнаружения истечений из наружных поло­вых органов и установления вагинитов, эндометритов, метри­тов, задержаний последа и других болезней.

Клинические формы маститов выявляют осмотром и паль­пацией молочной железы, обнаружением хлопьев и сгустков в молоке (секрете) при пробном сдаивании на фильтроваль­ную бумагу.

Результаты клинического исследования записывают в специальный журнал или диспансерную карту.

2.8. Исследования крови, мочи, молока, рубцового содер­жимого. Для того чтобы иметь наиболее полное представле­ние об уровне и состоянии обмена веществ, необходимо про­вести лабораторные исследования крови, мочи и молока, а в ряде случаев и рубцового содержимого.

2.8.1. Исследование крови. При основной и промежуточ­ной диспансеризации перед взятием крови проводят полное клиническое обследование животных. Кровь берут от клини­чески здоровых животных, не имеющих признаков травмати­ческого ретикулита, перикардита, гнойного мастита, эндомет­рита, задержания последа и других первичных заболеваний органов и систем, которые могут оказать влияние на показа­тели крови. На фермах с однотипным кормлением кровь бе­рут от 20-30 животных контрольных групп (по 5-7 живот­ных в каждой группе).

2.8.1.1. Кровь для исследования берут утром в 2 сухие чистые пробирки: в одну для получения цельной крови, в дру­гую для получения сыворотки. В пробирку для получения цельной крови или плазмы предварительно вносят противосвертывающее средство (антикоагулянт).

В расчете на 10 мл крови берут 10-20 мг лимоннокислого или щавелевокислого натрия, 2-3 капли 1%-ного раст­вора гепарина (1-2 мг, или 50 ед.), 10-15 капель 10%-ного раствора этилендиаминтетрауксусной кислоты натриевой со­ли (ЭДТА-натрия, трилон Б). Добавление указанных выше средств в больших количествах недопустимо, так как их вы­сокая концентрация вызывает в крови различные измене­ния - до гемолиза.включительно.

Кровь отправляют в лабораторию в день ее взятия. Ис­следование проводят по единым унифицированным методи­кам.

При пересылке на исследование крови в лабораторию ветеринарный врач или фельдшер составляет список живот­ных с обязательным указанием, от какой контрольной груп­пы или в какой физиологической фазе находятся животные.

Перечень исследуемых показателей крови зависит от характера предполагаемой патологии, а также от возможно­стей лаборатории.

2.8.1.2. Перед анализами сыворотку крови центрифуги­руют в течение 10 мин при 3000 об/мин, чтобы удалить фор­менные элементы крови, которые искажают результаты исс­ледования.

2.8.1.3. Общими показателями при проведении диспансеризации являются гемоглобин, число лейкоцитов, резервная щелочность. общий белок сыворотки крови, общий кальций, неорганический фосфор, каротин, специфическими - кетоновые тела, сахар, магний, сулемовая или другая печеночная пробы, микроэлементы, витамины А, С, Е и др.

Определение кетоновых тел и сахара в крови служит для диагностики кетоза, магния - для диагностики гипомагниемии, сулемовая проба - для определения функций печени; микроэлементов и витаминов - в целях обнаружения недо­статочности их в организме животного.

2.8.1.4. Гемоглобин крови определяют гемоглобинцианидным методом. Снижение уровня гемоглобина бывает при неполноценном кормлении, недостатке в рационах белка, минеральных и других веществ, при плохих зоогигиенических условиях содержания (темные, сырые, плохо вентилируемые помещения), хронических токсикозах. Это особенно ярко проявляется при патологии обмена веществ, связанной с не­достатком кобальта, железа, меди и витамина В12. Низкий уровень гемоглобина крови обнаруживают при кетозе, пора­жении печени, нитратно-нитритном токсикозе.

2.8.1.5. Количество лейкоцитов определяют с помощью счетных камер или автоматических счетчиков.

2.8.1.6. Общий белок сыворотки крови определяют с по­мощью рефрактометра или биуретовьгм методом.

В организме животных концентрация общего белка сыворотки крови находится в довольно постоянных пределах и изменяется при глубокой патологии обмена веществ, заболевании печени и других органов. Снижение общего белка сыворотки крови (гипопротеинемия) отмечается при длительном недокорме, алиментарной остеодистрофии, плохом усвоении белков корма, вследствие хронических расстройств желудочно-кишечного тракта, недо­статка лимитирующих аминокислот, макро- и микроэлемен­тов, витаминов. К гипопротеинемии приводят большие потери белка при нефрозах и нефритах, а также снижение его син­теза при циррозах печени. Повышение общего белка сыворотки крови (гиперпротеинемия) в условиях интенсивного ведения животноводства бывает значительно чаще, чем гипопротеинемия.

Причиной гиперпротеинемии могут быть белковый пере­корм, острые гепатиты, дистрофии и другие болезни печени. При этом количество общего белка сыворотки крови повы­шается за счет высокомолекулярных, крупнодисперсных фракций его - глобулинов при одновременном снижении уровня альбуминов. У высокопродуктивных коров количество общего белка сыворотки крови повышается чаще при кетозе и осложнении его вторичной остеодистрофией.

Содержание общего белка сыво­ротки крови у коров в летний период при использовании долголетних культурных пастбищ выше, чем зимой; у высо­копродуктивных коров выше, чем у низкопродуктивных. Уро­вень его перед отелом несколько снижается, но названные изменения не выходят за пределы нормы. Говорят о гипопротеинемии, если уровень общего белка сыворотки крови ниже 7,2 г%, гиперпротеинемии - выше 8,6 г%.

У молодых животных уровень общего белка сыворотки крови несколько ниже, чем у взрослых.

2.8.1.7. Резервную щелочность плазмы крови определяют диффузионным методом с помощью сдвоенных колб по Кондрахину И.П.

В организме животных постоянство кислотно-щелочного равновесия (рН) поддерживается четырьмя основными бу­ферными системами: гемоглобиновой, бикарбонатной, фос­фатной, белковой. В клинической практике большое значение придаётся бикарбонатной буферной системе, так как она наиболее лабильна и быстрее других систем реагирует на различные сдвиги в организме. Состояние бикарбонатной буферной системы оценивают по определению резервной щелочности (запасов бикарбонатов) плазмы крови.

Величина резервной щелочности крови измеряется коли­чеством углекислого газа (мл), выделенного из 100 мл плаз­мы крови, и выражается в объездных процентах об.% С02 или в мл СО2 на 100 мл плазмы крови.

В ветеринарной практике часто встречаются с явлением компенсированного метаболического ацидоза, проявляющего­ся в снижении резервной щелочности крови вследствие по­ступления в организм избытка кислых (фосфор, хлор, сера) и недостатка щелочных (натрий, кальций, калий, магний) элементов, кормления преимущественно концентратами или кислыми кормами (жом, барда, силос). Снижение резервной щелочности крови происходит при ацидозе рубца, кетозе, остеодистрофии и других формах нарушения обмена ве­ществ. Состояние компенсированного ацидоза часто отмеча­ют в стойловый период, когда в организме животных накап­ливается большое количество недоокисленных продуктов обмена, кислот, которые связывают бикарбонаты и другие щелочные компоненты крови.

Резервная щелочность снижается при расстройствах же­лудочно-кишечного тракта, нефритах, а также септических процессах, вследствие выведения из организма большого ко­личества натрия.

2.8.1.8. Кальций в крови находится в виде ионов и в свя­занном с белками состоянии. Общий кальций определяют комплексонометрическим методом с индикатором флюорексоном или мурексидом.

Снижение уровня кальция в крови отмечается при дли­тельном недостаточном поступлении его с кормом и водой и плохом усвоении вследствие дефицита витамина Д, болезней желудочно-кишечного тракта, нарушении оптимального со­отношения кальция и фосфора.

Гипокальциемия наступает при остеодистрофии, пастбищ­ной тетании, послеродовом парезе, нарушении функций щи­товидной и паращитовидных желез, заболеваниях печени (уменьшается всасывание кальция в кишечнике), а также при повышении концентрации в крови фосфора, нарушении соотношения между этими элементами).

При уменьшении содержания кальция в крови до 7 мг°/о у животных наступают нервные расстройства (тетания, судо­роги).

Повышение уровня кальция в крови может быть при передозировке витамина Д, острых панкреатитах. При гипер­функции паращитовидных желез содержание кальция в крови увеличивается, а фосфора уменьшается из-за усиленного выделения его с мочой.

2.8.1.9. Неорганический фосфор сыворотки крови определяют с ванадат-молибденовым реактивом.

При хранении сыворотки крови количество неор­ганического фосфора увеличивается за счет расщепления его органических соединений, поэтому кровь сразу после взятия рекомендуется осаждать равным объемом 20%-ной ТХУ и исследовать фильтрат. Безбелковый фильтрат в закрытых пробирках в холодильнике можно хранить 5-7 дней.

Снижение уровня неорганического фосфора в крови (гипофосфатемия) отмечается при недостатке этого элемента в кормах, плохом его усвоении вследствие заболеваний желу­дочно-кишечного тракта или печени, нарушения соотношения кальция и фосфора в кормах.

Гипофосфатемию наблюдают при остеодистрофии, одна­ко уменьшение количества фосфора в крови не всегда совпа­дает во времени с клинической картиной этого заболевания. В начальный период заболевания, когда костяк еще богат запасами солей фосфора, гипофосфатемии может не быть.

Гиперфосфатемия наступает при гиперфункции паращитовидных желез, нефритах, нефрозах, мышечном перенапряже­нии. В хозяйствах с.высококонцентратным типом кормления коров отмечается повышение уровня неорганического фосфо­ра в крови.

Важное диагностическое значение имеет соотношение в крови кальция и фосфора. У здоровых животных при нор­мальном уровне обмена веществ этот коэффициент равен 1,0-2,0. Повышение этого показателя более 3 (или снижение менее 1,5) указывает на патологию фосфорно-калъциевого обмена.

2.8.1.10. Неорганический магний сыворотки крови опреде­ляют по цветной реакции с титановым желтым или с магоном. Снижение магния в крови отмечается при пастбищной тетании (до 1,5-1,2 мг% и ниже), алиментарной остеодист­рофии, послеродовом парезе, транспортной болезни у коров. Гипомагниемия наступает вследствие поступления в организм избытка калия (с молодой травой) или азота.

2.8.1.11. Сахар (глюкозу) крови определяют по цветной реакции с ортолуидином, глюкозооксидазным методом. Концентрация сахара в крови быстро сни­жается вследствие распада глюкозы (гликолиза), поэтому сразу после взятия крови необходимо приготовить из нее безбелковый фильтрат.

В безбелковом фильтрате, хранящемся в холодильнике в закрытых пробирках, глюкозу можно исследовать в течение 3-5 дней.

Снижение уровня сахара в крови (гипогликемия) бывает при кетозе, вторичной остеодистрофии и некоторых других болезнях обмена веществ, а также поражениях печени из-за токсикоза. Значительную гипогликемию у коров отмечают в первые дни после отела вследствие большого расхода энер­гии при родах.

Наиболее часто снижение уровня сахара в крови является следствием дефицита легкоусвояемых углеводов в кормах, избыточного потребления глюкозы организмом при высоко-концентратном типе кормления, преобладании в рационах кислых кормов, содержащих в большом количестве уксусную и масляную кислоты.

Повышение содержания сахара в крови (гипергликемия) может быть стойким или непродолжительным. Непродолжи­тельная гипергликемия бывает при скармливании скоту боль­ших количеств сахаристых кормов, а также при испуге, высо­кой температуре, стрессовом состоянии. Стойкая гипергликемия наблюдается при сахарном диабете вследствие гипер­функции островковой ткани поджелудочной железы, продуци­рующей инсулин и переводящей сахар в гликоген. Незначительная гипергликемия бывает при ацидозе рубца.

2.8.1.12. Кетоновые тела (бета-оксимасляная кислота, ацетоуксусная кислота и ацетон) являются промежуточными продуктами обмена жиров, углеводов и белков.

Количественное определение кетоновых тел в крови в ветеринарной практике преимущественно проводят йодометрическим методом. Обнаружить кетоновые тела в сыворотке крови можно с помощью реактива Лестраде и реактивных полосок. Чувствительность реакции - около 10 мг% ацетона и ацетоуксусной кислоты или около 25 мг% и более обще­го количества кетоновых тел.

У здоровых коров в цельной крови общее количество кето­новых тел составляет 1-6 мг%, причем на долю бета-оксимасляной кислоты их приходится в 3-4 раза больше, чем ацетона и ацетоуксусной кислоты. При кетозе соотношение меняется в сторону увеличения ацетона и ацетоуксусной кис­лоты.

Наибольшая концентрация кетоновых тел в крови у здоровых животных бывает в первые 3 месяца лактации и пос­ледний месяц стельности. У высокопродуктивных коров кон­центрация кетоновых тел в крови выше, чем у низкопродук­тивных.

Стойкое повышение кетоновых тел в крови (гиперкетонемия) встречается при кетозе, достигая 25 мг% и выше. Наи­большая их концентрация бывает в начальный период забо­левания; при хроническом течении, потере аппетита и прояв­лении признаков вторичной остеодистрофии содержание в крови кетоновых тел - в пределах нормы или немного выше ее. При развитии вторичной остеодистрофии вследствие кетоза кетонурию не выявляют.

Повышение уровня кетоновых тел в крови наступает при усиленном распаде жиров, в фазе интенсивной лактации, при гиперфункции щитовидной и поджелудочной железы.

Причиной гиперкетонемии может быть скармливание животным большого количества силоса, сенажа, кислого жома и других кормов, содержащих в избытке уксусную и масляную кислоты. Накоплению в крови кетоновых тел спо­собствует высокая концентрация аммиака, который тормозит реакцию окисления ацетил-КоА в цикле трикарбоновых кис­лот.

Умеренная вторичная кетонемия может быть при травма­тическом перикардите, ретикулоперитоните, эндометрите, за­держании последа, хирургической инфекции и других септи­ческих процессах. Вторичная кетонемия (кетонурия) носит нестойкий характер и исчезает с устранением основного за­болевания.

2.8.1.13. Определяют каротин в сыворотке крови колори­метрическим методом с использованием эфира или бензина.

Витамин А в сыворотке крови определяют по методике Бессея в модификации А. А. Анисо­вой, витамин Е - по Биеру в модификации Р. Ш. Киселевич и С. И. Скварко, витамин С - по Климову. Снижение содер­жания в крови витаминов - признак развития гиповитаминозов.

В случае необходимости определяют мочевину в сыворот­ке крови по цветной реакции с диацетилмонооксимом, или уреазным, натрий и калий в плазме крови - на пламенном фотометре, йод в сыворотке крови - по Драгомировой, медь, цинк, кобальт, марганец в цельной крови - фотометре. Для характеристики липидного обмена определяют триглицериды по реакции с ацетилацетоном после экстрак­ции смесью гептана и изопропилового спирта, холестерин - по Ильку и другие вещества.

2.8.2. Исследование мочи. При диспансеризации животных исследованию мочи придают большое значение, т. к. в моче в ряде случаев можно установить патологические сдвиги, связанные с нарушением обмена веществ, а также с разви­тием других болезней.

Исследуют мочу от 10 - 20% животных контрольных групп (по 15 - 20 голов в группе). Для исследования подби­рают животных, не имеющих клинических признаков эндо­метрита, тяжелого, клинически выраженного мастита, задер­жания последа, травматического ретикулита, атонии пред-желудков.

Мочу исследуют непосредственно на ферме, определяя реакцию (рН), наличие ацетоновых (кетоновых) тел, белок, билирубин, уробилиноген и др.

вещества. Для анализа используют мочу, взятую в утренние часы.

Собирают мочу при самопроизвольном мочеиспускании или побуждают животных к мочеиспусканию легким масса­жем в области вентральной части половых губ вблизи кли­тора.

2.8.2.1. Определение реакции мочи (рН). Реакцию мочи чаще определяют с помощью универсальной индикаторной бумаги или реактивных (диагностических) полосок сразу пос­ле взятия образцов, так как при стоянии она ощелачивается вследствие образования карбоната аммония.

У здоровых коров рН мочи колеблется в пределах 7,0 — 8,6. Сдвиг реакции мочи в кислую сторону наступает при ацидотическом состоянии в организме, вызванном содержа­нием животных на рационах с преобладанием в них концентратов или кислых кормов. Сдвиг рН мочи в кислую сторону отмечается при кетозе, ацидозе рубца, воспалительных про­цессах в желудочно-кишечном тракте, пневмониях и некото­рых других воспалительных процессах.

Смещение реакции мочи в щелочную сторону наступает при алкалозе рубца, а также при поступлении в организм большого количества натрия и других щелочных элементов. Оно бывает также при циститах, пиелитах в результате брожения мочи и разложения мочевины.

2.8.1.2. Определение ацетоновых (кетоновых) тел в моче. Для определения ацетоновых тел в моче используют качественную пробу с реактивом Лестраде, основанную на реакции нитропруссида натрия с ацетоном и ацетоуксусной кислоты с появлением вишнево-фиолетового окрашивания. Чувствительность пробы по ацетону и ацетоуксуоной кислоте - около 10 мг%. Реактив

Лестраде готовят путем смешивания и тщательного растирания в ступке 1 части нитропруссида нат­рия, по 20 частей серно-кислого аммония и карбоната натрия безводного.

На фильтровальную бумагу насыпают около 0,1 г реакти­ва и на него наносят 2 - 3 капли мочи. Появление через 30 - 60 с сиреневого или темно-фиолетового окрашивания свиде­тельствует о наличии в моче кетоновых тел. Слабое окраши­вание смеси в розовый цвет с сиреневым оттенком означает, что в моче кетоновых тел не менее 20 мг%, в темно-фиолето­вый - свыше 200 мг%.

Значительная, стойкая кетонурия, обнаруживаемая у большого числа животных, свидетельст­вует о развитии кетоза. Умеренная, непродолжительная ке­тонурия может быть при дистонии преджелудков, эндометри­те, гнойном мастите, задержании последа.

2.8.3. Исследование молока. При проведении диспансери­зации коров в молоке определяют наличие кетоновых тел, а также используют данные о содержании жира и некоторых других веществ.

Кетоновые (ацетоновые) тела в молоке определяют непо­средственно на ферме или в лаборатории с помощью тех же экспресс-методов, которые применяют для обнаружения кето­новых тел в моче. При наличии кетоновых тел высокой кон­центрации реактив Лестраде с молоком дает вишнево-розовое окрашивание. Чем больше содержится кетоновых тел в молоке, тем интенсивнее окраска. С молоком здоровых ко­ров качественная проба дает отрицательные результаты. Обнаружение с помощью реактива Лестраде или другой пробы кетоновых тел в молоке указывает на развитие кетоза.

В молоке здоровых коров общее количество кетоновых тел (ацетон, ацетоуксусная и бета-оксимасляная кислоты) составляет 6-8 мг%.

В результате параллельных определений кетоновых тел в крови и молоке йодометрическим методом установлена пря­мая положительная связь между этими показателями. В стадах, где превалирующей патологией обмена веществ у коров является кетоз, во время промежуточной диспансеризации можно исследовать вместо крови молоко. Выраженная кетонолактия с концентрацией кетоновых тел выше 20 мг% отмечается у животных при развитии кетоза.

2.8.4. Исследование рубцового содержимого. Диагности­ческое значение имеют рН, уровень молочной кислоты, ам­миака, количество инфузорий, их подвижность, видовой состав и другие показатели.

Для исследования рубцовое содержимое берут утром через 3-4 ч после кормления, с помощью рото-пищеводного зонда и шприца Жанэ.

Первые порции содержимого рубца с наличием слюны выливают, так как они искажают результаты исследований.

Полученное содержимое отфильтровывают через 4 слоя марли от кормовых масс, консервируют 6-8 каплями хлоро­форма или толуола; в случае хранения или длительной тран­спортировки заливают слоем вазелинового масла (1 мл).

Для подсчета инфузорий пробу рубцовой жидкости кон­сервируют 10%-ным раствором формалина.

2.8.4.1. Определение рН. рН рубцовой жидкости опреде­ляют рН-метром или индикаторной бумагой, реактивными полосками. Оптимальный рН рубцового содержимого у коров, нетелей составляет 6,5—7,2. Снижение рН до 6,0 и ниже свидетельствует о развитии ацидоза рубца, сдвиг рН выше 7,2 характерен для алкалоза рубца.

Ацидоз рубца развивается при поедании большого коли­чества кормов, богатых сахарами и крахмалом (свекла, кормовая патока, зерновые злаковые, картофель и другие). При­чина алкалоза рубца - поедание большого количества зернобобовых, а также недоброкачественных (подгнивших) кормов и высоких доз мочевины.

2.8.4.2. Определение молочной кислоты в рубцовом содер­жимом проводят методом Гордона и Квасля в модификации А. П. Кротковой, Н. В. Курилова.

Молочная кислота в содержимом рубца находится в нор­ме в следовых концентрациях (не превышает 0,2 мМоль/л). При избыточном углеводном питании (кормовая, полусахар­ная свекла более 25 кг в сутки), использовании больших количеств зерновых крахмалистых концентратов содержание молочной кислоты в рубцовой жидкости резко возрастает, вызывая снижение рН рубцовой среды, а позднее - развитие ацидотического состояния в организме. Снижение рН и на­копление молочной кислоты в рубцовом содержимом изме­няет видовой состав и подвижность инфузорий.

2.8.4.3. Количество инфузорий в содержимом рубца опре­деляют в счетной камере с сеткой Горяева. Метод подсчета простейших в рубцовой жидкости не отличается от техники, используемой для подсчета лейкоцитов.

В рубцовом содержимом находится около 100 видов инфу­зорий, общая их численность варьирует от 200 до 1200 тыс./мл и зависит от состава рациона, вида кормов.

При использовании травостоя пастбищ, на сбалансирован­ном сено-силосно-концентратном рационе их количество ко­леблется от 400 до 500 тыс/мл, при одностороннем высококонцентратном, силосном кормлении или при использовании гранулированных кормов – 150-200 тыс./мл.

Количество инфузорий уменьшается при снижении рН рубцового -содержимого ниже 6,5 или повышении более 7,2.

2.8.4.4. Аммиак в рубцовом содержимом определяют мик­родиффузионным методом Конвея.

При оптимальном уровне рН (6,5-7,2) уровень аммиака в рубцовом содержимом составляет 6,5-25 мг% с.колебания­ми по сезонам года: в зимний период 6,5-20 мг%, в летний, при использовании травы долголетних культурных пастбищ, 20-25 мг%.

При ацидозе рубца происходит угнетение образования аммиака (распада кормового протеина), его количество сни­жается до 5-2 мг%, а иногда - до следов.

При алкалозе рубца, вызванном поступлением карбамида или азотсодержащих солей в больших количествах, когда рН среды превышает 7,2, в содержимом рубца аммиак в первые же часы возрастает до 60-70 мг% и удерживается на высоком уровне в -рубце и крови в течение первых суток О после скармливания.







Дата добавления: 2015-09-04; просмотров: 1231. Нарушение авторских прав; Мы поможем в написании вашей работы!



Функция спроса населения на данный товар Функция спроса населения на данный товар: Qd=7-Р. Функция предложения: Qs= -5+2Р,где...

Аальтернативная стоимость. Кривая производственных возможностей В экономике Буридании есть 100 ед. труда с производительностью 4 м ткани или 2 кг мяса...

Вычисление основной дактилоскопической формулы Вычислением основной дактоформулы обычно занимается следователь. Для этого все десять пальцев разбиваются на пять пар...

Расчетные и графические задания Равновесный объем - это объем, определяемый равенством спроса и предложения...

Виды и жанры театрализованных представлений   Проживание бронируется и оплачивается слушателями самостоятельно...

Что происходит при встрече с близнецовым пламенем   Если встреча с родственной душой может произойти достаточно спокойно – то встреча с близнецовым пламенем всегда подобна вспышке...

Реостаты и резисторы силовой цепи. Реостаты и резисторы силовой цепи. Резисторы и реостаты предназначены для ограничения тока в электрических цепях. В зависимости от назначения различают пусковые...

Тема: Составление цепи питания Цель: расширить знания о биотических факторах среды. Оборудование:гербарные растения...

В эволюции растений и животных. Цель: выявить ароморфозы и идиоадаптации у растений Цель: выявить ароморфозы и идиоадаптации у растений. Оборудование: гербарные растения, чучела хордовых (рыб, земноводных, птиц, пресмыкающихся, млекопитающих), коллекции насекомых, влажные препараты паразитических червей, мох, хвощ, папоротник...

Типовые примеры и методы их решения. Пример 2.5.1. На вклад начисляются сложные проценты: а) ежегодно; б) ежеквартально; в) ежемесячно Пример 2.5.1. На вклад начисляются сложные проценты: а) ежегодно; б) ежеквартально; в) ежемесячно. Какова должна быть годовая номинальная процентная ставка...

Studopedia.info - Студопедия - 2014-2024 год . (0.011 сек.) русская версия | украинская версия