Отбор пробы.1. Акмаева, Р.И. Экономика организаций (предприятий): Учебное пособие / Р.И. Акмаева, Н.Ш. Епифанова. - Рн/Д: Феникс, 2009. - 494 c. 2. Арсенова, Е.В. Экономика организации (предприятия): Учебник / Е.В. Арсенова, И.В. Корнеева; Под ред. Н.А. Сафронов. - М.: Магистр, 2011. - 687 c. 3. Веретенникова, И.И. Экономика организации (предприятия): Учебное пособие для бакалавров / И.В. Сергеев, И.И. Веретенникова; Под ред. И.В. Сергеев. - М.: Юрайт, 2013. - 671 c. 4. Волков О.И., Скляренко В.К. Экономика предприятия [Текст]: курс лекций. – М.: ИНФРА-М,2008. – 280с. – (100лет РЭА им. Г.В. Плеханова). 5.Выварец, А.Д. Экономика предприятия / А.Д. Выварец. - Москва: Издательство Юнити-Дана, 2007. - 544 с. 6.Гелета, И.В. Экономика организации (предприятия): Учебное пособие / И.В. Гелета, Е.С. Калинская, А.А. Кофанов. - М.: Магистр, 2011. - 303 c. 7.Грибов, В.Д. Экономика организации (предприятия): Учебное пособие / В.Д. Грибов, В.П. Грузинов, В.А. Кузьменко. - М.: КноРус, 2010. - 416 c. 8. Кнышова, Е.Н. Экономика организации: Учебник / Е.Н. Кнышова, Е.Е. Панфилова. - М.: ИД ФОРУМ, НИЦ ИНФРА-М, 2013. - 336 c. 9. Лопарева, А.М. Экономика организации (предприятия): Учебно-методический комплекс / А.М. Лопарева. - М.: Форум, НИЦ ИНФРА-М, 2013. - 400 c. 10. Любушин, Н.П. Экономика организации: Учебник / Н.П. Любушин. - М.: КноРус, 2011. - 304 c. 11.Менх Л.В.. Экономика и организация производства [Текст]: курс лекций / Л.В. Менх, Е.Е. Румянцева; 2007. 12.Новицкий Н.И., Горюшкин А.А. Организация производства [Текст]: Учебное пособие / Н.И. Новицкий, А.А. Горюшкин; под ред. Н.И. Новицкого. – М.: КНОРУС, 2009. – 352с. – (Среднее профессиональное образование) 13. Семенов В.М. Экономика предприятия: Учебник для вузов. 5-е изд. / Под ред. акад. В.М. Семенова – СПб.: Питер,2008. – 416с.: ил. – (Серия «Учебник для вузов») 14.Фролова Т.А.. Экономика предприятия: конспект лекций[Текст]. Таганрог: ТТИ ЮФУ, 2009. 15. Чечевицына, Л.Н. Экономика организации: Учебное пособие / Л.Н. Чечевицына, Е.В. Чечевицына. - Рн/Д: Феникс, 2013. - 382 c. 16.Производственная мощность, методика ее расчета, показатели использования производственных мощностей[Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://ekonomika-predpr.ru/index.php?action=full&id=377 17.Производственная мощность предприятия[Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://www.grandars.ru/college/ekonomika-firmy/proizvodstvennaya-moshchnost.html 19.Производственная мощность[Электронный ресурс]. – Режим доступа:http://profmeter.com.ua/Encyclopedia/detail.php?ID=979 20.Производственная мощность[Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://investments.academic.ru/1316/Производственная_мощность
Санитарно-бактериологический анализ воды Приборы и посуда: чашки Петри, водяная баня, стерильная пипетка, пробирки, термостат, лупа. Материалы и реактивы: питательная среда на агаре. Порядок выполнения работы Отбор пробы. Для отбора проб воды используют стерильные флаконы вместимостью 0,5 л с пробкой. Проба должна быть исследована не позднее чем через 2 ч после отбора. 2. Определение общего числа бактерий в вод е. Сущность метода заключается в определении в 1 мл воды общего содержания мезофильных, мезотрофных аэробов и факультативных анаэробов, способных расти на питательной агаризованной среде данного состава при температуре 37±0,5°С в течение 24±2 ч, при этом образовывать колонии, видимые при увеличении в 2— 5 раз. Питательную среду расплавляют в водяной бане и охлаждают до температуры 45±5°С. Стерильные чашки Петри раскладывают на столе и пишут на крышках номер пробы, дату посева и объем посеянной воды. Из каждой пробы должен быть сделан посев не менее двух различных объемов, выбранных с таким расчетом, чтобы на чашках Петри выросло от 30 до 3000 колоний. При исследовании водопроводной воды засевают в каждую из двух чашек по 1 мл. С флаконов с пробами снимают бумажные колпачки, вынимают пробки, горлышки фломбируют (держат несколько секунд над пламенем), после чего воду тщательно перемешивают осторожным продуванием воздуха через стерильную пипетку. Стерильной пипеткой отбирают соответствующие объемы воды и вносят в стерильные чашки, слегка приоткрывая крышку. Для посева 0,1 мл и меньших объемов воды используют разведения анализируемой воды. Для этого в пробирку с 9 мл стерильной воды вносят 1 мл анализируемой воды. При этом пипетка должна быть опущена ниже поверхности воды не более чем на 3 мм, чтобы избежать смывания бактерий с наружной стороны. Другой стерильной пипеткой продуванием воздуха тщательно перемешивают содержимое пробирки, отбирают из нее 1 мл и переносят в чашку, что будет соответствовать посеву 0,1 мл анализируемой воды. При необходимости посева меньших объемов воды этой же пипеткой переносят 1 мл содержимого первой пробирки в следующую, с 9 мл стерильной воды. Посев 1 мл из второй пробирки будет соответствовать посеву 0,01 мл анализируемой воды и т. д. После внесения воды в чашку Петри ее заливают 10—12 мл остывшей питательной среды при фламбировании краев посуды со средой. Воду быстро смешивают с питательной средой, осторожно наклоняя или вращая чашку по поверхности стола. Необходимо избегать образования пузырьков воздуха, незалитых частей дна чашки, попадания среды на края и крышку. После этого чашки оставляют на горизонтальной поверхности до застывания среды. Затем чашки с посевами помещают в термостат вверх дном не более чем по 4 чашки вместе. Посевы выращивают при 37±0,5°С в течение 24 ч. Колонии, выросшие как на поверхности, так и в глубине агара, подсчитывают при помощи лупы с увеличением в 2—5 раз или прибора1 для счета колоний. Для этого чашку кладут вверх дном на черный фон. Для большей точности каждую подсчитанную колонию отмечают со стороны дна специальной тушью или чернилами. Оценивают только те разведения, при посеве которых на чашке выросло от 30 до 300 колоний. При посеве 1 мл неразведенной пробы учитывают любые количества колоний, но не превышающие 300. Если в чашке1 с наиболее высоким разведением выросло свыше 300 колоний и анализ нельзя повторить, допускается подсчитывать колонии при помощи пластинки с сеткой и лупы при сильном боковом освещении. Подсчитывают не менее 20 квадратов площадь в 1 см2 каждый в разных местах чашки, затем выводят среднее арифметическое числа колоний, приходящихся на 1 см2. Эту величину умножают на площадь чашки S (в см2), вычисленную по формуле S = πR2. Результаты подсчета колоний в каждой чашке выражают числом бактерий в 1 мл анализируемой воды с учетом посеянного объема. За окончательный результат принимают среднее арифметическое результата подсчета на двух параллельных чашках или разных разведений. Результат округляют следующим образом: если результат находится в пределах чисел от 1 до 100, записывают те числа, которые получены; если результат находится в пределах от 101 до 1000, округляют до 10; если результат находится в пределах чисел от 1001 до 10000, округляют до 100 и т. д. Число колоний учитывают, ориентируясь на одну чашку в следующих случаях: если на другой чашке при посеве из разведения выросло не менее 20 колоний; при ползучем росте бактерий, распространившемся на всю поверхность чашки или занимающем значительные зоны и маскирующимся ростом других колоний; при количестве колоний свыше 300. Счетную пластинку рекомендуется применять при подсчете числа колоний, когда на обеих чашках отмечен ползучий рост. При этом подсчитывают квадраты на свободных от сплошного роста местах чашки.
из упаковки фильтры проверяют на отсутствие дефектов и затем опускают по одному в химический стакан с нагретой до 60—80°С дистиллированной водой. Воду доводят до кипения, после чего ее заменяют и кипятят еще 10 мин. Смену воды и последующее кипячение повторяют 3—5 раз до полного удаления остатков растворителей из фильтров, после чего их можно использовать. Воду фильтруют с помощью прибора Зейтца или Семенова — Гольдмана. Перед фильтрованием прибор Зейтца протирают ватным тампоном, смоченным спиртом, и стерилизуют фламбированием. После охлаждения на нижнюю часть прибора (столик) помещают фламбированным пинцетом стерильный мембранный фильтр, прижимают его верхней частью прибора (воронкой) к столику и закрепляют. Затем в воронку прибора при соблюдении правил асептики наливают исследуемую воду и создают вакуум в приемном сосуде. Через один мембранный фильтр пропускают такое количество воды, чтобы на фильтре выросло не более 30 колоний. Чистую воду открытого водоема фильтруют в объеме 100, 10, 1 и 0,1 мл. При исследовании загрязненной воды ее предварительно, разводят стерильной водой. Фильтруют сначала меньшие, а затем большие объемы воды. После окончания фильтрования воронку снимают, фильтр осторожно приподнимают за край фламбированным пинцетом и переносят его, не переворачивая, на среду Эндо. Поверхность фильтра с осевшими на ней бактериями должна быть обращена вверх. Под каждым фильтром со стороны дна чашки делают надпись с указанием объема профильтрованной воды, даты посева и номера пробы. На одну чашку можно поместить 3—4 фильтра с условием, чтобы фильтры не соприкасались.
Если исследуемая вода содержит большое количество взвешенных веществ, то ее фильтруют сначала через предварительный фильтр № 6. Для этого его помещают в прибор над фильтром № 3. После окончания фильтрования оба фильтра переносят на среду Эндо. При выведении результатов анализа учитывают рост бактерий на обоих фильтрах. Чашки с фильтрами на среде Эндо помещают в термостат дном вверх и культивируют при 37°С в течение 18—24 ч, после чего оценивают результаты исследования. Наличие колоний с неровной поверхностью и краями, а также других колоний, нетипичных для бактерий группы кишечных палочек, позволяет дать отрицательный ответ на присутствие этих бактерий в воде. При наличии на фильтрах колоний, типичных для бактерий группы кишечных палочек (темно-красных с металлическим блеском и без него, розовых, прозрачных), из нескольких колоний готовят мазки, окрашивают по Граму и микроскрпируют. При обнаружении в мазках грамотрицательных коротких полиморфных, не образующих спор палочек, выполняют оксидазный тест. Оксидазный тест предназначен для дифференциации бактерий семейства Enterobacteriaceae от грамотрицательных бактерий семейства Pseudomonadaceae и других водных сапрофитных бактерий, которые обладают активной оксидазой и окисляют фенилендиаминовые соединения до индофенола, окрашивающего колонии в ярко-синий цвет. Колонии, не изменившие своего первоначального цвета, — оксидазоотрицательные, относят к семейству Enterobacteriaceae. Отсутствие оксидазы у темно-красных с металлическим блеском и без него колоний грамотрицательных палочек позволяет дать положительный ответ о наличии бактерий группы кишечных палочек и закончить исследование воды подсчетом оксидазоотрицательных колоний и вычислением коли-индекса. При обнаружении на фильтрах розовых и бесцветных колоний грамотрицательных палочек с отрицательной оксидазной активностью их подсчитывают и 2—3 изолированных колонии каждого типа высевают в полужидкую среду с глюкозой. Культивируют при 37°С и проводят учет через 4—5 ч. Наличие кислоты и газа в полужидкой среде с глюкозой подтверждает принадлежность этих бактерий к группе кишечных палочек. Коли-индекс вычисляют следующим образом. Количество бактерий группы кишечных палочек, выросших при посеве исследуемого объема воды, умножают на 1000 мл и делят на весь объем исследуемой воды. Если на одном из фильтров наблюдается сплошной рост бактерий и подсчет их невозможен, то коли-индекс вычисляют по тому объему, в котором на фильтре выросли изолированные колонии. Например, в 100 мл посеянного объема из фильтре сплошной рост бактерий, в объеме 10 мл на фильтре выросло 12 колоний бактерий кишечной палочки, следовательно, коли-индекс равен (12·1000): 10= 1200. Метод бродильных проб. Сущность метода заключается в следующем. Производят посев определенных объемов исследуемой воды в глюкозо- или лактозопептонные среды и культивируют при 37°С в течение 24 ч. Затем высевают на среду Эндо, изучают выросшие колонии и по табл. 16, 17, 18 определяют наиболее вероятное число бактерий группы кишечных палочек в 1 л воды. Воду методом бродильных проб исследуют в три этапа. На первом этапе определенные объемы исследуемой воды высевают во флаконы и пробирки с глюкозопептонной средой и индикатором. Флаконы (пробирки) снабжены поплавками для учета газообоазования. Посев 100 и 10 мл воды производят во флаконы и пробирки с 10 и 1 мл концентрированной среды; посев 1 и 0,1 мл воды — в пробирки с 10 мл среды нормальной концентрации. Посевы культивируют при 37°С в течение 24 ч. На втором этапе исследования из флаконов и пробирок, где отмечено помутнение, образование кислоты и газа, производят высев бактериологической петлей штрихами на поверхность среды Эндо (предварительно чашку со средой Эндо со стороны дна делят на секторы). Посевы культивируют при 37°С 18—24 ч. На третьем этапе изучают колонии, выросшие на среде Эндо, отбирают типичные для бактерий группы кишечных палочек, готовят мазки, красят по Граму и микроскопируют. При наличии грамотрицательных полиморфных бесспоровых палочек ставят оксидазный тест. Для этого 2—3 изолированные колонии каждого типа, выросшие на среде Эндо, снимают петлей и наносят штрихом на фильтровальную бумагу, смоченную реактивом. Если оксидазный тест отрицательный, то в месте нанесения бактериальной массы цвет бумаги не изменяется, если положительный (бактерии имеют активную оксида-зу), то бумага синеет в течение 1 мин. Наличие на среде Эндо темно-красных колоний грамотрицательных палочек, не обладающих оксидазной активностью, позволяет дать положительный ответ на присутствие бактерий группы кишечных палочек в исследуемом объеме воды. При анализе питьевой воды учитывают и те секторы на среде Эндо, где выросли только розовые и бесцветные колонии. При обнаружении грамотрицательных палочек, не обладающих оксидазной активностью, из этих колоний (розовых и бесцветных) делают высев в полужидкую среду с глюкозой, культивируют 4—5 ч при 37°С. Наличие кислоты и газа в среде с глюкозой дает право на положительный ответ. Результат анализа выражают в виде коли-индекса, величину которого определяют по табл. 16—18.
|
