Асептика,определения,понятия.

Асептика {а - без, septicus - гниение) - комплекс мероприятий, обеспечивающий предупреждение попадания микробов в операционную рану и организм больного.

Основной закон асептики - все, что соприкасается с раной, должно быть стерильно.

Традиционно выделяются два источника инфицирования: экзогенный и эндогенный. Экзогенной считается инфекция, попадающая в рану из внешней среды.

Выделяют следующие пути распространения экзогенной инфекции;

• воздушно-капельный (инфекция переносимая воздушными потоками — пыль, капли жидкости),

• контактный (инфекция переносится с предметами, соприкасавшимися с раневой поверхностью - руки хирурга, инструменты, перевязочный материал и др.);

• имплантационный (инфекция, попавшая в рану с шовным и пластическим материалом, дренажами, протезами).

Эндогенной считается инфекция, находящаяся внутри организма

(инфекция верхних дыхательных путей, желудочно-кишечного тракта, мочевыводящих путей и др.) или на его покровах - аутоинфекция, которая может попасть в инфекционный очаг по лимфатическим или кровеносным сосудам, а также контактным путем.

К методам борьбы и профилактики воздушно-капельной инфекции можно отнести соблюдение медицинским персоналом и больными правил личной гигиены, ношение медицинских масок, организацию адекватной вентиляции, применение бактерицидных ламп.

Медицинские маски используются для уменьшения выделения при

дыхании капель секрета из носоглотки и ротовой полости в окружа­

ющую среду.

В настоящее время широко используют только фильтрующие типы

масок. Наиболее часто используют марлевые маски, при этом их эффективность напрямую зависит от количества слоев:

-трехслойные марлевые маски, полностью закрывающие нос и

рот, задерживают до 70% выдыхаемых микроорганизмов;

- четырехслойные - до 88%;

- шестислойные - до 96%.

По мере увлажнения марли фильтрующая способность маски снижается. Так, например, спустя 3 часа от начала использования 100% трехслойных марлевых масок обильно загрязнены микрофлорой.

С целью повышения эффективности фильтрующих масок последние пропитываются антисептиком (хлоргексидином биглюконатом и др.), высушиваются и автоклавируются, что позволяет удлинить срок

эффективного использования в 1,5-2 раза.

Наиболее часто применяемые в настоящее время целлюлозные маски сохраняют эффективность не более часа. Значительно реже применяются в настоящее время отражающие маски, в которых конденсат, образующийся при выдыхании воздуха, стекает по стенкам маски в специально предназначенные для этой

цели емкости. К недостаткам данного типа масок относится, прежде всего, неудобство использования.

Маски необходимо носить в следующих случаях:

• всем медицинским работникам в операционной, перевязочной;

• в ряде случаев в отделении реанимации и палатах интенсивной

терапии;

• при выполнении любых инвазивных манипуляций (перевязка в

условиях палаты, инъекции и др.);

• при эпидемии гриппа.

Вентиляция. Проветривание помещения позволяет снизить коли­

чество микробных тел на 30%. Если используется система вентиляции

с бактериальными фильтрами, то эффективность увеличивается до

70-80%.

В тех случаях, когда к уровню микробной обсемененности помещения предъявляют особые требования, может быть использована приточная вентиляция, обеспечивающая приток воздуха в большем

объеме по сравнению с оттоком. Операционные с ламинарным потоком воздуха. В операционных указанного типа стерильный воздух постоянно нагнетается через потолок операционной. В результате создается равномерное ламинарное движение воздуха, что препятствует возникновению турбулентных

потоков, поднимающих с нестерильных поверхностей пыль и микроорганизмы.

Палаты с абактериальной средой. Особенностью таких палат является наличие бактериальных фильтров, через которые обеспечивается ламинарное поступление воздуха. В палатах, как правило, поддерживается повыщенная температура - 22-25° и низкая влажность (до 50%).Такие палаты наиболее часто используются в отделениях трансплантации органов и тканей и ожоговых центрах.

Основными источниками контактной инфекции являются следующие:

• руки хирурга;

• кожные покровы больного;

• хирургические инструменты;

• шовный материал, дренажи, скобки, различные конструкции и др.;

• Перевязочный материал.

Стерилизация — метод, обеспечивающий ликвидацию в стерилизуемом материале как вегетативных, так и споровых форм (в отличие от дезинфекции, когда споровые формы могут сохраняться) патогенных, условно-патогенных и непатогенных микроорганизмов. С целью снижения уровня микробной обсемененности применяют термическую (паровая, воздушная), лучевую (радиактивными микроэлементами, ультразвуковыми, ультрафиолетовыми и инфракрасными лучами) и химическую стерилизацию (окисью этилена, парами формалина, пропиленом, бромистым метилом и др.). Согласно современным представлениям кипячение не относится к методам стерилизации.

Существует 3 группы способов контроля стерильности.

Физический — контроль за температурой в стерилизационной камере с помощью термометра; использование веществ (плавкие индикаторы), имеющих определенную температуру плавления. Плавкие

индикаторы представляют собой порошкообразные вещества разного цвета, герметично запаянные в стеклянные ампулы.

В медицинской практике используется различные плавкие инди­

каторы:

• никотинамид (порошок белого цвета с температурой плавления

132 °С);

• сахароза (порошок белого цвета с температурой плавления 180 °С);

• гидрохинон (порошок белого цвета с температурой плавления

180 "О;

• левомицетин (порошок белого цвета с температурой плавления

132 °С);

• тиомочевина (порошок желтого цвета с температурой плавления

180 -С);

• бензойная кислота (порошок розового цвета с температурой плав­

ления 120 °С);

• мочевина (порошок фиолетового цвета с температурой плавления

132 °С) и др.

Химический - использование различных химических процессов, протекающих при определенной температуре, например фильтровальная бумага, смоченная в растворах крахмала и Люголя, приобретает темно-бурый цвет, при экспозиции в автоклаве при температуре свыше 120 °С крахмал разрушается, бумажка обесцвечивается.

Биологический — посев со стерильного материала на питательные среды. Нет роста колоний — материал стерильный, есть — необходима повторная стерилизация.

Бактериологический контроль качества стерилизации проводят

один раз в 10 дней. Методы бактериологического контроля:

• прямой метод - в стерильных условиях осуществляют забор образца материала (салфетка, шарик, шовный материал и т.д.), помешают в стерильную пробирку и отправляют в бактериоло­

гическую лабораторию;

• непрямой метод (биотест) - пробирку, содержащую известную культуру микроорганизмов помещают в стерилизатор вместе со стерилизуемым материалом и проводят стандартный цикл обработки. После завершения стерилизации пробирку с биокультурой отправляют в бактериологическую лабораторию. Материал из бикса, использованного для биотеста для работы не используют. При отсутствии роста микрофлоры делают заключение об адекватности стерилизации.

Дезинфекция — комплекс мероприятий, направленных на прерыва­

ние путей передачи возбудителей посредством ликвидации патогенных и условно—патогенных микроорганизмов в помещениях лечебно-профилактических учреждений, на оборудовании, инструментах,

предметах ухода за больными с целью профилактики заражения пациентов, медицинского и технического персонала.

Виды дезинфекции:

• механический - мытье помещений и предметов моющими растворами, стирка, вентиляция и др.;

• физический - воздействие высокой температуры, высушивание, ультрафиолетовое облучение и др.;

• химический - применение антисептических и дезинфекционных средств;

• комбинированный - сочетание нескольких видов дезинфекции.