КЛИНИЧЕСКОЕ ОБСЛЕДОВАНИЕ СТАДА РЫБ

Клинический осмотр проводят выборочно непосредственно в водоеме, при контрольном отлове или посадке рыб в специальные емкости (аквариумы, садки, бассейны и т. п.). Рекомендуется про­сматривать не менее 100 рыб каждого вида и возраста из каждой зоны, отличающейся по гидрологическому, гидрохимическому и гидробиологическому режиму.

Клинический осмотр рыб, подозрительных по тому или иному заболеванию, начинают с наблюдения за их поведением водоеме или в аквариуме, обращая при этом внимание на характер и координацию движения, частоту дыхательных движений жаберных крышек, реакцию на внешние раздражители (шум, удары сачком, попытку поймать рыбу руками и ряд других).

Регистрируют нарушение поведения рыб: пугливость, угнетение, возбуждение, координацию движения, равновесие в воде.

Следовательно, по поведению рыб в водоеме можно предположительно определить причину неблагополучия и наметить направление дальнейших диагностических исследований.

Внешний осмотр рыб, подозрительных по заболеванию проводят на месте непосредственно при ее вылове или в лаборатории, куда ее доставляют в живом виде. Перед осмотром необходимо определить вид рыбы, ее все, размер и возраст.

Вначале тщательно осматривают кожные покровы и плавники, обращая внимание на количество и качество слизи, изменение окраски, наличие припухлостей, кровоизлияний, язв, рубцов, цист, ерошение чешуи и т. д. Приподнимая жаберные крышки, осматривают жабры. Обращают внимание на окраску, форму, рисунок и степень ослизнения жабр, структуру лепестков, просматривая их с помощью лупы. На губах и слизистой ротовой полости встречаются кровоизлияния, язвы, новообразования. Важ­но не пропустить изменения на глазах: западания глаз или пучегла­зие (экзофтальм), кровоизлияния, помутнение хрусталика и рого­вицы. Проводят учет больных рыб в абсолютном и процентном вы­ражениях (заболеваемость).

Четкое и подробное описание клинических признаков той или иной болезни является ценным материалом в постановке диагноза болезни, так и в определении направления лабораторных исследований.

 

Тема «ЛАБОРАТОРНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ»

Цель занятия: научить правила взятия и пересылки больных рыб и патологического материала для лабораторных исследований.

Задания для практической работы: взять материал от больных для лабораторного исследования и оформить сопроводительную на исследуемый материал.

 

Больных или подозрительных рыб доставляют в ве­теринарную лабораторию живыми. Для исследования берут 10—15 рыб (старшего возраста — 5) на различных стадиях болезни с явно выраженными клиническими признаками.

Рыб перевозят в молочных бидонах или других ем­костях, заполненных на 3/4 объема водой из того же во­доема, откуда они взяты, или водой из артезианской сква­жины.

Летом при длительной транспортировке воду с ры­бой постепенно охлаждают до температуры 12—15 °С, добавляя мелкие кусочки льда. Чтобы не вызвать у рыб температурного шока, нальзя допускать перепад темпе­ратуры воды исходного водоема и транспортной емкости более 5—7 °С.

Если доставить в лабораторию живую рыбу невоз­можно, для бактериологического исследования берут ку­сочки органов и тканей рыб, помешают их в стерильную стеклянную посуду с 40%-ным водным раствором глице­рина, закрывают пробкой, заливают парафином и направ­ляют с нарочным.

Кровь, экссудат и другой жидкий патологический материал доставляют в стерильных запаянных пастеров­ских пипетках. Для микроскопического исследования эти же материалы посылают в лабораторию в виде мазков и препаратов-отпечатков (кляч-препаратов).

Для обнаружения бактерий исследуют выделения, органы и ткани рыб, а также кровь, экссудат, содержимое абсцессов, опухолей, инфильтратов, выделения из язв, паренхиматозные органы, содержимое кишечника, слизь с жабр и поверхности тела.

Летом бактериологические исследования патологи­ческого материала проводят не позднее чем через 2 часа после взятия. В исключительных случаях в лаборатории рыбоводного хозяйства делают бактериологические по­севы на мясо-пептонный бульон и мясо-пептонный агар.

Для вирусологического исследования берут кусочки пораженных органов и тканей массой не более 3—5 г, за­мораживают или консервируют в 50%-ном растворе хи­мически чистого глицерина (рН 7, 2—7, 4) в соотношении 1: 5—1: 10, помещают в стерильные флаконы, закрывают пробкой и заливают парафином.

Материал для гистологических исследований берут от погибших и вынужденно убитых рыб. Мелких рыб (мальки и сеголетки) после вскрытия брюшной полости фиксируют целиком, а от крупных берут органы или ку­сочки органов размером 2x3 см и толщиной 0, 5— 1, 0 см. Кусочки из пораженных органов и тканей вырезают так, чтобы были захвачены нормальные и измененные участ­ки. Независимо от степени поражения берут кусочки кожи с подлежащей мускулатурой, жабр, печени, почек, селезенки, сердца, кишечника, плавательного пузыря, головного мозга. Кишечник перед фиксацией осторож­но вскрывают или делают на нем несколько надрезов, чтобы фиксирующая жидкость проникла в его полость. Головной мозг осторожно извлекают после вскрытия че­репной коробки. Подлежащий исследованию материал помещают в широкогорлую стеклянную банку и фикси­руют 10%-ным формалином в объеме, в 10 раз превы­шающем объем взятого материала.

Для гистохимических исследований патологическо­го материала в качестве фиксатора используют жидкость Карнау (спирт абсолютный — 60 мл, хлороформ — 30 мл и ледяная уксусная кислота — 10 мл) или жидкость Буэна (насыщенный раствор пикриновой кислоты — 75 мл, концентрированный формалин — 25 мл, ледяная ук­сусная кислота — 5 мл). Так как выбор фиксатора зави­сит от цели дальнейшей обработки материала, на этикет­ке указывают фиксирующий раствор.

Кровь для исследований берут пастеровской пипеткой из хвос­товых сосудов (артерии и вены) или из сердца с соблюдением пра­вил асептики и антисептики (рис. 3).

 

 

Рис. 1. Места взятия крови из хвостовых сосудов карпа: