Студопедия — СРЕДСТВА СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ, ТЕРАПИИ И ДИАГНОСТИКИ ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ 4 страница
Студопедия Главная Случайная страница Обратная связь

Разделы: Автомобили Астрономия Биология География Дом и сад Другие языки Другое Информатика История Культура Литература Логика Математика Медицина Металлургия Механика Образование Охрана труда Педагогика Политика Право Психология Религия Риторика Социология Спорт Строительство Технология Туризм Физика Философия Финансы Химия Черчение Экология Экономика Электроника

СРЕДСТВА СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ, ТЕРАПИИ И ДИАГНОСТИКИ ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ 4 страница






 

Рис. 83. Колонии В. anthracis на агаре под малым увеличением. Образование локонов

 

 

В выросших культурах исследуют морфлогические и тинкто-риальные свойства клеток. В мазках, окрашенных по Граму, об­наруживают длинные цепочки из грамположительных типичных палочек; в мазках из культур на средах с диффузным ростом на­ходят отдельные или парные палочки (рис. 84...86). На бессыво­роточных средах бактерии капсулу не образуют, на сывороточ­ных средах возбудитель формирует капсулу, причем клетки в препарате в последнем случае чаще располагаются одиночно или парами.

При значительной контаминации материала посторонней микрофлорой (сырье животного происхождения, объекты внеш­ней среды) посев делают на се­лективный агар следующего состава: расплавленный МПА — 100 мл, сульфат полимиксина М —0, 5 мл, невиграмон —0, 5 мл, гризеофульвин — 1 мл, моющее средство «Прогресс» —10 мл, фенолфталеинфосфат натрия — 0, 1 мл; перемешивают, разлива­ют по чашкам Петри. Через 18...24ч культивирования на внутрен­нюю поверхность крышки чашки Петри наносят 1...2мл 25%-го водного раствора аммиака, чашку переворачивают. Колонии В. anthracis остаются бесцветными, колонии бактерий с фосфатазной активностью розовеют.

Рис. 86. Клетки В. anthracis в крови животного: 1 — клетки возбудителя с капсулой; 2 — форменные элементы крови

Биопроба. Заражение лабораторных животных исходным мате­риалом — обязательный этап, проводимый сразу после поступле­ния материала в лабораторию. Тканевой суспензией заражают подкожно двух белых мышей по 0, 2...0, 5 мл или морских свинок по 0, 5...2 мл. Наблюдение ведут в течение 10 сут. При наличии возбудителя животные погибают обычно через 1...3 cyт. Павших животных исследуют с выделением культуры возбудителя.

Если в ходе указанных исследований выделена бактерия, ти­пичная для В. anthracis по морфологическим, тинкториальным и культуральным свойствам, патогенная для лабораторных живот­ных, то дальнейшие исследования не проводят и диагноз счита­ют установленным.

В случае получения нечетких результатов при вышеизложен­ных исследованиях проводят дополнительные с целью диффе­ренциации выделенной культуры от сходных сапрофитных бацилл, и в первую очередь от В. cereus. При этом определяют спо­собность микроорганизма к капсулообразованию путем посева на сывороточные среды, патогенность для лабораторных живот­ных в биопробе, чувствительность к пенициллину, сибиреязвен­ному бактериофагу, специфичность к сибиреязвенным люминесцирующим сывороткам, гемолитическую активность, наличие жгутиков (табл. 22).

Тест «жемчужного ожерелья» разработан для определения чувствительности выделенного микроорганизма к пенициллину. В две колбочки (пробирки) с расплавленным МП А (температура 45...50°С) добавляют пенициллин из расчета 0, 05...0, 5 ЕД/мл и переносят в две чашки Петри, в третью чашку наливают обыч­ный МПА. После застывания агара из него вырезают пластинки размером 1, 5 см2, которые переносят на предметные стекла и по­мещают в чашки Петри. На каждую пластинку бактериологичес­кой петлей наносят исследуемую 3-часовую бульонную культуру. Чашки выдерживают 1...3 ч в термостате. Затем посевы просмат­ривают под микроскопом с объективом х 40 и иммерсионной си­стемой. Перед просмотром зону роста накрывают покровным стеклом. Сибиреязвенные микробы на МПА с пенициллином приобретают шаровидную форму, а цепочки — вид «жемчужного ожерелья». Спорообразующие сапрофитные аэробы в аналогич­ных условиях растут в обычной форме. На агаре без пенициллина сибиреязвенные микробы образуют длинные цепочки из типич­ных палочек.

Для определения чувствительности к сибиреязвенному бакте­риофагу культуру или материал засевают на скошенный МПА, за­тем на поверхность среды наносят каплю бактериофага в рабочем титре и посевы выдерживают при температуре 37...38°С 24 ч. В случае принадлежности культуры к В. anthracis на поверхности МПА в зоне нанесения бактериофага остается стерильная зона при наличии роста микроорганизма на остальных участках среды.

Для идентификации В. anthracis методом люминесцирующих антител используют флуоресцирующую адсорбированную сыво­ротку, не дающую перекрестных реакций с антигенно-родственными сапрофитными бациллами.

Гемолитическую активность исследуемой культуры определя­ют посевом на 5%-й МПА или в МПБ.

Наличие жгутиков исследуют посевом в 0, 3%-й МПА или ме­тодом «раздавленной капли».

Если для исследования поступил загнивший материал, кото­рый нельзя подвергать бактериологическому исследо­ванию, то диагноз ставят на оснований обнаружения антигенов возбудителя в материале при помощи реакции кольцевой преци­питации.

Материал экстрагируют физиологическим раствором (соотно­шение 1: 10) путем кипячения в течение 30...40 мин (горячий способ). Экстракцию смеси тканевой суспензии и карболизиро-ванного физиологического раствора (соотношение 1: 10) можно проводить в течение 16... 18 ч при комнатной температуре (холод­ный способ). Экстракт фильтруют через асбестовую вату и иссле­дуют в РП.

Реакцию ставят методом «наслаивания» или «подслаивания». При «наслаивании» в преципитационную пробирку вносят 0, 2...0, 3 мл преципитирующей сыворотки и осторожно наливают (наслаивают) исследуемый экстракт таким образом, чтобы ком­поненты не перемешивались. При «подслаивании» в пробирку вначале вносят 0, 2...0, 3 мл экстракта, затем под него пастеровс­кой пипеткой — равное количество сибиреязвенной преципити­рующей сыворотки. Одновременно ставят контроли (см. далее). Реакцию считают положительной, если через 1...2 мин и не поз­же чем через 15 мин на границе между компонентами появился тонкий беловатый диск преципитации.

В ветеринарных лабораториях часто исследуют на сибирскую язву в РП кожевенно-меховое сырье. В лабораторию доставляют пробы кожевенного сырья в виде небольших квадратиков (или кружков), взятых от шкур в местах, вырез которых не снижает товарной ценности. Эти пробы нанизывают на тонкую проволо­ку в том порядке, в котором шкуры расположены на складе. Поступившие пробы обязательно стерилизуют автоклавированием при 1, 5 атм 30 мин. Затем пробы измельчают и берут навески: 1 г — от парного, мороженого, пресно-сухого и сухосоленого сы­рья и 2 г — от мокросоленого. Пробы заливают экстрагирующей жидкостью (физиологический раствор, содержащий 0, 3 % крис­таллического фенола).

Пробы сырья от всех видов животных экстрагируют холодным способом при комнатной температуре в течение 16...20 ч; пробы от свиных шкур кипятят 30 мин. Экстракты фильтруют через ас­бестовую вату до прозрачности (предварительно взболтав содер­жимое баночек с пробами). Компоненты соединяют методом «наслаивания» или «подслаивания».

Контроли РП. 1. Контроль преципитирующей сыворотки: а) со стандартным сибиреязвенным антигеном (результат поло­жительный в течение 1...2 мин); б) с экстрактом из заведомо бла­гополучных боенских кож (результат отрицательный в течение 1 ч); в) с экстрагирующей жидкостью (результат отрицательный в течение 1ч). 2. Контроль асбестовой ваты на нейтральность (при поступлении каждой новой партии асбестовой ваты).

Учет результатов РП проводят через 10... 15 мин для пресно-сухого (одиночные пробы), через 30 мин — для пресно-сухого (сдвоенные пробы) и сухосоленого (одиночные пробы), через 60 мин — для сухосоленого (сдвоенные пробы) и мокросоленого сырья.

При исследовании на сибирскую язву свежего тканевого мате­риала, а также при идентификации выделенных культур можно использовать реакцию диск-преципитации, которая основана на взаимодействии продуктов метаболизма возбудителя (антиген), растущего в жидкой питательной среде, с антителами преципи­тирующей сибиреязвенной сыворотки.

В стерильную бактериологическую пробирку вносят 0, 5...1 мл преципитирующей сибиреязвенной сыворотки, на ее поверх­ность осторожно (по стенке пробирки) наслаивают расплавлен­ный (45...50°С) 1%-й агаровый гель столбиком высотой 5...7 мм. Далее на поверхность застывшего агара наливают 1... 1, 5 мл жид­кой питательной среды (МПБ, среда ГКИ и т. д.) и в нее делают посев исследуемого тканевого материала или идентифицируемой культуры микроорганизма.

Посевы выдерживают при 37...38 °С 16...20 ч. Результаты учи­тывают, просматривая пробирку в проходящем свете на черном фоне. В положительном случае в средней части столбика агаро­вого геля обнаруживают тонкую белую четкую линию (диск) пре­ципитации. Сапрофитные бациллы при росте в этой системе преципитации не дают. Некоторые штаммы В. cereus могут вызы­вать в нижней части агарового столбика образование рыхлой тол­стой зоны преципитации, которая за 30...40 ч разрыхляется и сливается с преципитирующей сывороткой.

Биопрепараты. Вакцина СТИ — живая вакцина из эталонного штамма, полученного Н. Н. Гинсбургом (1944), представляет со­бой споровую (95... 100 %) агаровую культуру в виде суспензии в 30%-м стерильном растворе глицерина; содержит (2, 5...3, 5)*107 жизнеспособных спор в 1 мл. Вакцину контролируют на чистоту роста, концентрацию спор, безвредность на кроликах, иммуногенность на морских свинках.

Вакцина ГНКИ — сухая живая вакцина из эталонного штамма ГНКИ. Содержит 5 • 107 спор в 1 мл. Готовят и контролируют так же, как вакцину СТИ. Срок годности сухой вакцины 3 года.

Вакцина против сибирской язвы из штамма № 55.

Ассоциированная живая жидкая вакцина против сибирской язвы и эмфизематозного карбункула крупного рогатого скота.

Лечебно-профилактическую сибиреязвенную сыворотку по­лучают гипериммунизацией лошадей инактивированной сиби­реязвенной культурой. Сыворотку проверяют на стерильность, безвредность на белых мышах и морских свинках, активность на кроликах. Также выпускают противосибиреязвенный глобу­лин.

Сибиреязвенная преципитирующая сыворотка предназначе­на для исследования материала на сибирскую язву в реакции преципитации. Сыворотку получают гипериммунизацией лоша­дей.

Сибиреязвенный стандартный антиген для РП выпускают для контроля активности преципитирующей сыворотки. Представля­ет собой экстракт из инактивированной бактериальной массы В. anthracis.

Сибиреязвенные люминесцирующие сыворотки готовят из сибиреязвенной преципитирующей сыворотки; предназначены для ускоренного обнаружения некапсулированных клеток возбу­дителя в первичных посевах.

Сибиреязвенные диагностические бактериофаги представля­ют собой освобожденную от бактерий путем фильтрования жид­кость бульонной культуры возбудителя, зараженную бактериофа­гом. Титр бактериофага 10.

 

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Изучить и описать морфологические, тинкториальные и культуральные свойства В. anthracis.

2. Освоить технику постановки РП для исследования тканево­го и кожевенно-мехового сырья на сибирскую язву.

3. Ознакомиться с феноменом «ожерелья» и сибиреязвенными биопрепаратами.

Контрольные вопросы

1. Каковы правила взятия патологического материала?

2. Какие методы применяют для бактериологической диагностики сибирской
язвы?

3. Каковы морфологические, тинкториальные и культуральные свойства

B. anthracis?

4.На чем основана дифференциация В.anthracis от сапрофитных спорообразую-щих аэробов?

5.Как идентифицируют возбудитель сибирской язвы при помощи сибиреяз­венного бактериофага?

6. Что такое феномен «ожерелья»?

7. Какие серологические методы применяют для обнаружения сибиреязвенного
антигена в исследуемом материале?

 

 

Тема 26

ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА ЗЛОКАЧЕСТВЕННОГО ОТЕКА, АНАЭРОБНОЙ ДИЗЕНТЕРИИ ЯГНЯТ, БРАДЗОТА, ИНФЕКЦИОННОЙ ЭНТЕРОТОКСЕМИИ, ЭМФИЗЕМАТОЗНОГО КАРБУНКУЛА. БИОПРЕПАРАТЫ

Цель занятия. Ознакомить студентов со свойствами возбудите­лей, схемами лабораторного исследования, биопрепаратами.

Оборудование и материалы. Культуры С. perfringens, С. chauvoei, C. septicum на среде Китта—Тароцци, глюкозо-кровяном агаре, среде Вильсона—Блера, трупы морских свинок, павших после заражения перечисленными анаэробами, наборы инструментов в стерилизаторах для вскрытия трупов морских свинок, пастеровские пипетки, стерильная среда Китта—Тароцци в пробирках, анаэростаты.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Злокачественный отек. Это неконтагиозное инфекционное за­болевание животных всех видов, возникающее после ранений, травм, родов, кастраций. Характеризуется быстро увеличивающимися, крепитирующими, болезненными отеками, распадом тканей и сепсисом.

У злокачественного отека полимикробная этиология. Основ­ные возбудители: С. septicum, С. perfringens, С. novyi (oedematiens), С. histolyticum, С. sordellii, а иногда С. chauvoei. Каждый из них может самостоятельно вызвать заболевание, но чаще их выделя­ют в ассоциации друг с другом или другими анаэробными и аэробными микроорганизмами (стафилококки, стрептококки и др.). Из сопутствующих микроорганизмов важную роль играет С. sporogenes, придающий процессу гнилостный характер и суще­ственно отягощающий течение болезни. Возбудителей злокаче­ственного отека относят к роду Clostridium.

Лабораторная диагностика злокачественного отека основана на результатах бактериологического исследования.

Бактериологическое исследование вклю­чает в себя обнаружение возбудителя в исходном материале ме­тодами световой микроскопии и биопробы, выделение чистой культуры посевом на питательные среды и методом биопробы, идентификацию возбудителя по культурально-морфологическим, ферментативным, серологическим, токсигенным (в РН) и пато­генным свойствам (в биопробе).

Материал для исследования. В лабораторию направляют кусоч­ки пораженных мышц, тканевый экссудат и паренхиматозные органы, а при поражении половых органов — истечения из влага­лища и кусочки органов.

Микроскопия препаратов из исходного материала. Мазки-отпе­чатки окрашивают по Граму. При микроскопировании отмечают форму микробных клеток, их взаимное расположение, тинктори­альные свойства, образование спор и капсул, ориентируясь на характеристики возбудителей, изложенные в таблице 23 (рис. 87...91).

 

Рис. 87. С. perfringens в отечной жидко­сти:

1 — клетки возбудителя с капсулой;

2 — фор­менные элементы

 

 

Выделение и идентификация культуры возбудителя. Возбуди­тели — облигатные анаэробы, температурный оптимум 37... 38 º С. Исследуемый материал высевают на среды Китта—Та­роцци, Вильсона—Блера, куль­тивируют 24...48 ч. Посевы на средах в чашках Петри инкубируют в анаэростате (крышкой вверх). В первичных посевах обыч­но вырастают смешанные культуры, поэтому, чтобы получить чистые культуры, из первичных посевов делают дробный рассев на глюкозо-кровяной агар Цейсслера в чашках Петри.

 

У выделенных культур изучают морфологические, тинктори-альные, культуральные и ферментативные свойства, принимая во внимание данные по свойствам возбудителей, указанные в табли­цах 23, 24. При необходимости определяют токсигенные свойства возбудителей и тип токсина в реакции нейтрализации (см. тему 19).

По антигенному составу токсических факторов различают 6 сероваров С. perfringens — А, В, С, D, Е, F.

С. perfringens серовар А вызывает злокачественный отек у лю­дей и животных, пищевую токсикоинфекцию у лошадей, энтеро-токсемию у телят и свиней, некротический мастит у рогатого скота. С. perfringens серовар В — возбудитель анаэробной дизен­терии у ягнят, телят, поросят, козлят, жеребят. С. perfringens серо­вар С вызывает геморрагическую энтеротоксемию у овец, телят, поросят, ягнят, коз, верблюдов. С. perfringens серовар D — возбу­дитель энтеротоксемии у овец, коз, телят, кроликов. С. perfringens серовар Е выделяют при энтеротоксемии у телят и ягнят. С. perfringens серовар F вызывает некротический энтерит людей.

 

По составу растворимых антигенов токсина различают четыре серовара С. novyi — А, В, С и D.

С. novyi серовар А выделяют при злокачественном отеке жи­вотных и человека и при брадзоте. С. novyi серовар В — возбуди­тель некротического гепатита овец, крупного рогатого скота и свиней, газовой гангрены у людей. С. novyi серовар С вызывает хронический остеомиелит у буйволов. С. novyi серовар D — воз­будитель инфекционной иктерогемоглобинурии у крупного рога­того скота, овец и свиней.

 

Биопроба. Одновременно с посевом патологического материа­ла на питательные среды заражают морских свинок. Патологи­ческий материал измельчают, тщательно растирают в стерильной ступке, добавляют небольшое количество МПБ. Полученную смесь вводят подкожно в область брюшных мышц двум морским свинкам массой 350...400 г по 0, 5... 1 мл. При наличии в исследуе­мом материале возбудителя злокачественного отека морские свинки погибают через 16...48 ч в зависимости от вида возбудите­ля. При вскрытии у павших животных обнаруживают патолого-анатомические изменения, характерные для того или иного вида возбудителя (табл. 25).

Из ткани в месте введения патологического материала, а так­же из крови сердца, печени готовят мазки-отпечатки и делают посевы на среду Китта—Тароцци, МПА и в МПБ.

Для проверки вирулентности выделенных культур суточную культуру, выращенную на среде Китта—Тароцци, вводят под­кожно в область брюшных мышц двум морским свинкам в дозе 0, 5... 1 мл. Наблюдение за подопытными животными ведут в тече­ние 8 сут.

Брадзот овец. Острая токсикоинфекция овец. Характеризуется геморрагическим воспалением слизистой оболочки сычуга и две­надцатиперстной кишки, а также дегенеративными изменения­ми паренхиматозных органов.

Возбудители брадзота— С. septicum и С. novyi (oedematiens).

Лабораторную диагностику проводят, как при злокачествен­ном отеке. Материалом для исследования при подозрении на брадзот служат измененные участки сычуга и инфильтрат под­кожной клетчатки.

Токсичность С. novyi (oedematiens) определяют на двух белых мышах, которым внутривенно или внутрибрюшинно вводят фильтрат двухсуточных исследуемых культур. При наличии ток­сина мыши погибают через 24...72 ч.

Анаэробная дизентерия ягнят. Острая токсикоинфекция, пора­жающая ягнят в первые пять дней жизни. Характеризуется ге­моррагической энтеротоксемией и сопровождается высокой смертностью.

Возбудитель болезни — С. perfringens В.

Материалом для исследования служат свежий труп ягненка или перевязанный с обеих сторон отрезок пораженного кишеч­ника с содержимым, кусочки паренхиматозных органов, брыже­ечные лимфоузлы, трубчатая кость.

Содержимое желудка и кишечника направляют в лабораторию после консервирования хлороформом (одна капля на 10 мл пато­логического материала) или стерильным 30...40%-м раствором глицерина.

Отобранные пробы должны быть доставлены в лабораторию в течение четырех часов с момента гибели животного, а консерви­рованные — в течение 1...2 сут.

Диагноз ставят при выделении чистой культуры возбудителя и обнаружении токсина в содержимом тонкого кишечника.

Выделение чистой культуры С. perfringens проводят, как при злокачественном отеке. Токсин и его тип определяют метода­ми, изложенными в разделе «Анаэробная энтеротоксемия» и в теме 19.

Анаэробная энтеротоксемия. Острая инфекционная болезнь преимущественно молодняка, характеризующаяся геморрагичес­ким гастроэнтероколитом, признаками токсемии, некрозом вор­синок тонкого отдела кишечника.

Возбудитель энтеротоксемии овец, коз, кроликов — С. perfringens тип D, телят — С. perfringens типы С, D, Е, поро­сят — С. perfringens типы В, С.

Лабораторная диагностика анаэробной энтеротоксемии состо­ит из двух этапов: 1) обнаружения токсина возбудителя в содер­жимом кишечника; 2) выделения чистой культуры и идентифи­кации возбудителя по культурально-морфологическим, патоген­ным и токсигенным свойствам.

Материалом для исследования служат содержимое поражен­ного отдела кишечника и кусочки паренхиматозных органов.

Для обнаружения токсина содержимое кишечника разводят физиологическим раствором в соотношении 1: 1 (1: 2), экстраги­руют при комнатной температуре 1 ч, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, центрифугируют при 3000...5000 мин-1 20 мин. Надосадочную жидкость вводят внутривенно или внутрибрю­шинно двум белым мышам по 0, 5 мл или внутривенно кролику 1, -1, 5 мл. При наличии в исследуемом материале токсина жи­вотные погибают в течение 12 ч. В случае гибели в более поздние сроки (до 24 ч) проводят бактериологическое исследование, что­бы исключить какую-либо другую инфекцию.

При обнаружении токсина в содержимом кишечника присту­пают к определению типа токсина в реакции нейтрализации (см. тему 19). Реакцию ставят на белых мышах, морских свинках или кроликах. При постановке реакции на мышах результаты оцени­вают по гибели или выживанию животных, которым ввели смесь сывороток и токсина. При использовании морских свинок и кро­ликов результат учитывают по наличию или отсутствию некроза на месте внутрикожного введения смеси: у животных удаляют шерсть на боку и на следующий день в этот участок вводят смесь сыворотки и токсина.

Второй этап исследования — бактериологический метод выде­ления возбудителя — проводят по общепринятой методике. По­ лученную культуру С. perfringens изучают по морфологическим, тинкториальным, культуральным, патогенным и токсигенным свойствам.

Эмфизематозный карбункул (эмкар). Острое инфекционное за­болевание рогатого скота. Характеризуется развитием отечных крепитирующих припухлостей в мышечной ткани. К эмкару бо­лее восприимчив крупный рогатый скот, реже овцы и козы.

Возбудитель эмфизематозного карбункула — С. chauvoei, род Clostridium.

Лабораторная диагностика эмкара основана на результатах бактериологического исследования.

Бактериологическое исследование прово­дят по той же схеме, что и исследование на злокачественный отек.

Материал для исследования. В лабораторию направляют кусоч­ки пораженных мышц, экссудат из крепитирующего очага. Пора­женный участок разрезают в глубину и из средней части мышцы отбирают кусочки ткани размером 3 см3. При вскрытии трупа бе­рут также кусочки печени и селезенки, кровь сердца. Материал для лабораторного исследования отбирают не позднее чем через 4 ч после гибели животного. В жаркое время года материал кон­сервируют стерильным 30%-м водным раствором глицерина.

Микроскопия препаратов из исходного материала. С. chauvoei — толстая крупная грамположительная палочка размером (0, 5...1, 6) х (1, 5...9) мкм, возбудитель — перитрих, образует споры в культуре и тканях, капсулу не формирует. Из нативного мате­риала готовят мазки-отпечатки и окрашивают по Граму. При микроскопии обнаруживают отдельные или попарно лежащие полиморфные (веретенообразные, шаровидные, грушевидные) грамположительные палочки со спорами, расположенными цен­трально или субтерминально или находящимися отдельно от ве­гетативной клетки; палочка со спорой может напоминать по форме точильный камень или разливательную ложку.

Выделение и идентификация культуры возбудителя. Строгий анаэроб, температурный оптимум 36...38 º С. Исследуемый ма­териал высевают на среду Китта—Тароцци, глюкозо-кровяной агар, МПА, в МПБ. При поступлении несвежего материала из него готовят суспензию на физиологическом растворе (соотно­шение 1: 4), которую прогревают при 80 °С 15...20 мин для унич­тожения сопутствующей микрофлоры и только после этого дела­ют посев на питательные среды. Посевы культивируют 24...48 ч.

При росте С. chauvoei на среде Китта—Тароцци сначала наблю­дают равномерное помутнение бульона, распределяющееся по всему столбику. Через 20...24ч среда начинает просветляться и че­рез двое суток становится прозрачной, а на дне пробирки образу­ется осадок микробных клеток. Газообразование незначительное.

На агаре Цейсслера обнаруживают характерный рост колоний в виде перламутровой пуговицы или виноградного листа с обра­зованием вокруг колоний неширокой зоны гемолиза.

Биопроба. Одновременно с посевами заражают лабораторных животных. Исследуемый материал измельчают, растирают в сте­рильной ступке с небольшим количеством МПБ. Полученную суспензию (соотношение 1: 10) вводят подкожно в области брюшных мышц двум морским свинкам по 0, 5... 1 мл. При нали­чии в материале возбудителя животные погибают в течение 1...4 сут. У павших морских свинок на коже в месте инъекции наблюдают серозно-гемрррагический выпот, кровоизлияния. Кожа от пораженных мышц отделяется с трудом, мышцы темно-красного цвета, в паховых и реже подмышечных областях обна­руживают небольшие скопления газа. Кишечник не вздут, орга­ны брюшной полости без видимых изменений.

В мазках-отпечатках с диафрагмальной поверхности печени обнаруживают отдельно лежащие палочковидные бактерии, что служит одним из дифференцирующих признаков от С. septicum, при заражении которым в аналогичных мазках обнаруживают нити или длинные цепочки. В случае необходимости возбуди­тель дифференцируют от С. septicum по критериям, изложенным в таблице 26.

 

Биопрепараты. Поливалентная концентрированная вакцина против брадзота, инфекционной энтеротоксемии, злокачествен­ного отека овец и дизентерии ягнят состоит из смеси нативных токсических бульонных культур, обезвреженных теплом и фор­малином, сорбированных на геле гидроксида алюминия и затем концентрированных. Содержит С. perfringens типов В и D, С. novyi и С. septicum. Активность контролируют на кроликах пос­ле двукратной иммунизации путем определения количества ан­тител в реакции нейтрализации.

Поливалентный анатоксин против клостридиозов овец содержит анатоксины С. perfringens типов С и D и С. septicum, сорбированные на геле гидроксида алюминия. К готовым анатоксинам С. perfringens добавляют 25 % вакцины С. septicum. Активность контролируют на овцах путем иммунизации с пос­ледующим определением количества антител в РН. Активность препарата относительно С. septicum устанавливают вакцинацией кроликов с последующим заражением смертельной дозой куль­туры.

Антитоксическую сыворотку против анаэробной дизентерии ягнят и инфекционной энтеротоксемии овец получают иммуни­зацией волов-продуцентов анатоксинами С. perfringens типов С и D. Иммунную сыворотку проверяют на активность в РН; 1 мл препарата должен содержать не менее 10АЕ антитоксинов каж­дого типа.

Антитоксические сыворотки С. perfringens типов А, С, D и Е для диагностики болезней животных, вызываемых С. perfringens, получают гипериммунизацией овец или валухов очищенными анатоксинами типов А, С, D и Е. Сыворотки предназначены для идентификации токсинов С. perfringens в РН.

Гидроокисьалюминиевая вакцина против эмфизематозного карбункула крупного рогатого скота и овец представляет собой инактивированную формалином, сорбированную на геле гидро-ксида алюминия реакторную культуру С. chauvoei, концентриро­ванную путем удаления 2/3 культуральной жидкости после сорб­ции. Активность препарата проверяют на морских свинках.

 

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Изучить морфологические, тинкториальные и культураль-ные свойства возбудителей, описать их признаки.

2. Провести вскрытие трупов морских свинок, приготовить окрашенные мазки-отпечатки, обнаружить возбудитель путем микроскопии.

3. Из органов и тканей провести посев материала на среду Китта—Тароцци с целью выделения культуры возбудителя.

4. Ознакомиться с биопрепаратами.

 

Контрольные вопросы

1.Какие микроорганизмы вызывают злокачественный отек?

2.Какие среды применяют для культивирования клостридий?

3. Каковы отличительные признаки С. perfringens от других клостридий—возбудителей злокачественного отека?

4. На каких животных ставят биопробу при эмфизематозном карбункуле?

5. Каковы морфологические и культуральные свойства возбудителя эмфизематозного карбункула?

 

Тема 27

ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА СТОЛБНЯКА, БОТУЛИЗМА. БИОПРЕПАРАТЫ

Цель занятия. Ознакомить студентов с методами лабораторной диагностики и биологическими свойствами возбудителей столб­няка и ботулизма







Дата добавления: 2014-11-10; просмотров: 2807. Нарушение авторских прав; Мы поможем в написании вашей работы!



Вычисление основной дактилоскопической формулы Вычислением основной дактоформулы обычно занимается следователь. Для этого все десять пальцев разбиваются на пять пар...

Расчетные и графические задания Равновесный объем - это объем, определяемый равенством спроса и предложения...

Кардиналистский и ординалистский подходы Кардиналистский (количественный подход) к анализу полезности основан на представлении о возможности измерения различных благ в условных единицах полезности...

Обзор компонентов Multisim Компоненты – это основа любой схемы, это все элементы, из которых она состоит. Multisim оперирует с двумя категориями...

Эндоскопическая диагностика язвенной болезни желудка, гастрита, опухоли Хронический гастрит - понятие клинико-анатомическое, характеризующееся определенными патоморфологическими изменениями слизистой оболочки желудка - неспецифическим воспалительным процессом...

Признаки классификации безопасности Можно выделить следующие признаки классификации безопасности. 1. По признаку масштабности принято различать следующие относительно самостоятельные геополитические уровни и виды безопасности. 1.1. Международная безопасность (глобальная и...

Прием и регистрация больных Пути госпитализации больных в стационар могут быть различны. В цен­тральное приемное отделение больные могут быть доставлены: 1) машиной скорой медицинской помощи в случае возникновения остро­го или обострения хронического заболевания...

Решение Постоянные издержки (FC) не зависят от изменения объёма производства, существуют постоянно...

ТРАНСПОРТНАЯ ИММОБИЛИЗАЦИЯ   Под транспортной иммобилизацией понимают мероприятия, направленные на обеспечение покоя в поврежденном участке тела и близлежащих к нему суставах на период перевозки пострадавшего в лечебное учреждение...

Кишечный шов (Ламбера, Альберта, Шмидена, Матешука) Кишечный шов– это способ соединения кишечной стенки. В основе кишечного шва лежит принцип футлярного строения кишечной стенки...

Studopedia.info - Студопедия - 2014-2024 год . (0.01 сек.) русская версия | украинская версия