СРЕДСТВА СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ, ТЕРАПИИ И ДИАГНОСТИКИ ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ 8 страница

Преципитированная формолвакцина против пастереллеза овец и свиней представляет собой выращенные в реакторе в бу­льоне Хоттингера культуры пастерелл серовара В, инактивированные формальдегидом, сорбированные алюмокалиевыми квас­цами. Контролируют на стерильность, безвредность (белые мыши), иммуногенность на голубях.

Гипериммунную сыворотку против пастереллеза крупного рогатого скота, буйволов, овец и свиней получают гиперимму­низацией волов. Контролируют на стерильность, безвредность (белые мыши, морские свинки), на специфическую активность на белых мышах, которым ее вводят по 0, 1; 0, 05 и 0, 03 мл. Сы­воротку признают активной, если при контрольном заражении остаются живыми мыши, привитые первыми двумя дозами пре­парата.

Полужидкая гидроокисьалюминиевая формолвакцина против пастереллеза крупного рогатого скота и буйволов представляет собой культуру пастерелл серовара В, выращенную в полужидкой агаровой среде в реакторе, инактивированную формальдегидом и сорбированную на геле гидроксида алюминия. Контролируют так же, как и преципитированную формолвакцину.

Сухие вакцины против пастереллеза птиц из штаммов АВ и К Краснодарской НИВС представляют собой лиофилизированные реакторные культуры вакцинных штаммов АВ и К. Контролиру­ют на чистоту и типичность роста, безвредность и иммуноген­ность на курах.

Кроме того, выпускают инактивированные вакцины, содер­жащие три серовара P. multocida (А, В, D).

Гемофилезный полисерозит. Септическое заболевание поросят раннего послеотъемного периода. Характеризуется серозно-фибринозным воспалением плевры, перикарда, брюшины, суставов, иногда отмечают менингоэнцефалит.

Возбудитель — Haemophilus parasuis, род Haemophilus, семей­ство Pasteurellaceae.

Лабораторная диагностика гемофилезного полисерозита осно­вана на результатах бактериологического исследования.

Бактериологическое исследование вклю­чает в себя обнаружение возбудителя в исходном материале ме­тодом световой микроскопии, выделение чистой культуры посе­вом на питательные среды и идентификацию возбудителя по культурально-морфологическим, ферментативным и патогенным свойствам.

Материал для исследования. Стерильно отбирают серозно-фибринозный экссудат из перитонеальной, плевральной, перикардиальной полостей, пораженных суставов, а также пораженные се­розные оболочки.

Микроскопия препаратов из исходного материала. Мазки окра­шивают по Граму и на капсулы бактерий. Н. parasuis — мелкие тонкие грамотрицательные палочки, без спор и жгутиков, образуют капсулу. Возбудитель обнаруживают в виде полиморфных грамотрицательных палочек, диплобактерий, коротких цепочек из палочек, а также в виде нитей.

Выделение и идентификация культуры возбудителя. Факульта­тивный анаэроб, температурный оптимум 37...38 °С. Так как воз­будитель — ауксотроф по коферменту ДПН, он не растет на обычных питательных средах. Материал засевают на «шоколад­ный» агар в чашках Петри и кровяной МПА с бактерией - «кормилкой».

«Шоколадный агар»: к расплавленному МПА (рН 7, 2...7, 4) температурой 80...90°С добавляют 10% стерильной дефибринированной крови барана или лошади. Компоненты перемешивают и после охлаждения до 50...80 º С среду разливают по чашкам Петри, пробиркам.

На кровяной МПА (5 % крови барана, кролика, лошади) ис­следуемый материал засевают шпателем по всей поверхности среды. Затем по диаметру чашки в виде двух прямых линий под углом 90° засевают культуру негемолитического штамма S. epidermidis или Е. coli. Посевы инкубируют при 37...38 º С 24...48 ч в условиях обычной атмосферы.

На «шоколадном» МПА возбудитель формирует мелкие, круг­лые, прозрачные, с ровными краями и гладкой поверхностью ко­лонии. На кровяном МПА возбудитель растет в виде мельчайших негемолитических колоний только вблизи «штриха» бактерии - «кормилки» на удалении не более 0, 5...1, 0 см (рис.105). Такой рост H. parasuis называют «сателлитным»; он связан с тем, что бактерия - «кормилка» синтезирует ДПН, который диффундирует в толщу агаровой среды и в этой зоне способен расти ауксотроф H. parasuis. «Шоколадный» агар содержит ДПН, выделенный из разрушенных эритроцитов, и поэтому H. parasuis растет по всей поверхности питательной среды. Для проверки у культуры бакте­рий зависимости от ДПН ее дополнительно высевают на сыворо­точный «шоколадный» агар. Культуры возбудителя растут на «шоколадном» и не растут на сывороточном МПА, поскольку в последнем отсутствует ДПН.

 

 

Рис. 105. Рост сателлитиых колоний гемофильных бактерий:

а — «штрих» бактерии - «кормилки»;

б— мел­кие сателлитные колонии гемофильных бак­терий

 

Из подозрительных колоний на «шоколадном» агаре или «сателлитных» колоний на кровя­ном агаре готовят мазки, окра­шивают по Граму, на капсулы по методу Гинса, определяют наличие жгутиков в препарате «раздавленная капля»: Н. parasuis неподвижен.

У культур исследуют уреазную активность посевом на среду Заксе: раствор А: 96%-й этанол —2 мл и дистиллированная вода —4 мл; раствор Б: дистиллированная вода — 100 мл, дигидрофосфат калия —0, 1 г, гидрофосфат калия —0, 12 г, хлорид на­трия—0, 5 г, добавляют 1 мл 2%-го раствора фенолового красно­го. Смешивают растворы А и Б в соотношении 1: 19; смесь разли­вают по 0, 1 мл в уленгутовские пробирки и вносят бактериологи­ческую петлю исследуемой культуры. Пробирки выдерживают при 37...38 °С 30...40 мин и учитывают результат. В положитель­ном случае раствор за счет расщепления мочевины и защелачивания среды приобретает малиново-красный цвет. Н. parasuis уреазу не вырабатывает.

Биопроба. Метод применяют для определения вирулентных свойств культур Н. parasuis. Суточной агаровой культурой в дозе 2*10⁹ микробных клеток заражают внутрибрюшинно морских свинок массой 300...350 г. Наблюдение за животными ведут в те­чение 5 сут.

Актинобациллезная (гемофилезная) плевропневмония. Инфек­ционная болезнь свиней преимущественно двух-трехмесячного возраста и откормочных животных. Характеризуется развитием фибринозно-геморрагической некротизирующей пневмонии и фибринозного плеврита.

Возбудитель — бактерия Actinobacillus pleuropneumoniae, род ActinobaciUus, семейство Pasteurellaceae.

Лабораторная диагностика актинобациллезной плевропневмонии свиней основана на результатах бактериологического исследова­ния.

Бактериологическое исследование вклю­чает в себя обнаружение возбудителя в исходном материале ме­тодом световой микроскопии, выделение чистой культуры посе­вом на питательные среды и идентификацию возбудителя по культурально-морфологическим, ферментативным и серологи­ческим свойствам.

Материал для исследования. В лабораторию направляют кусоч­ки пораженных легких, средостенные и бронхиальные лимфати­ческие узлы.

Микроскопия препаратов из исходного материала. Мазки-отпе­чатки окрашивают по Граму и одним из методов для выявления капсулы. A. pleuropneumoniae — короткие грамотрицательные па­лочки с закругленными концами, чаще располагаются в виде парных коккобактерий, могут образовывать короткие цепочки, нитевидные формы, формируют капсулу, спор нет. Возбудитель в исследуемом материале обнаруживают в форме мелких кокко­бактерий, коротких палочек, окруженных капсулой, расположен­ных единично, парами, в виде коротких цепочек (рис. 106, 107).

 

Выделение и идентификация культуры возбудителя. Факульта­тивный анаэроб, температурный оптимум 37...38 °С, рН 7, 2...7, 4. Известны два биовара возбудителя: ДПН-зависимый (Первый биовар), ДПН-независимый (Второй биовар).

Исследуемый материал засевают на 5%-й кровяной МПА с «бактерией-кормилкой» или «шоколадный» и сывороточно-дрожжевой МПА, в МПБ (5 % сыворотки крови крупного рогатого скота, 10 % дрожжевого экстракта). Дрожжевой экстракт служит источником ДПН. Посевы инкубируют в условиях обыч­ной атмосферы при 37...38 º С 24 ч.

При зараженности материала ДПН-зависимым возбудителем на кровяном МПА обнаруживают «сателлитные» мелкие (0, 1...0, 2 мм), гладкие, выпуклые, с ровными краями слизистые колонии, окруженные зоной бета-гемолиза. ДПН-независимые штаммы растут по всей поверхности кровяного МПА без «сател-литного» феномена. На «шоколадном» агаре оба биовара A. pleuropneumoniae формируют серо-белые колонии диаметром 1, 0...2, 6 мм правильной круглой формы, выпуклые, с гладкой по­верхностью, ровными краями, слизистой консистенции.

На сывороточно-дрожжевом МПА колонии возбудителя серо-белые, полупрозрачные, диаметром 1...2мм, правильной круглой формы, с ровными краями, гладкой поверхностью. При исследо­вании колоний на этой среде в пучке косопроходящего света в бинокулярной лупе они видны как ярко-зеленые с красноватым оттенком, при наблюдении в косопроходящем свете невоору­женным глазом флуоресцируют.

В сывороточно-дрожжевом МПБ возбудитель растет с равно­мерным, средней интенсивности помутнением среды, позднее (48...72 ч) на дне пробирки образуется серо-белый осадок.

Из подозрительных колоний готовят мазки, окрашивают по Граму, на капсулы — по Гинсу, определяют наличие жгутиков микроскопией препарата «раздавленная капля». В мазках из культур возбудитель обнаруживают в форме коротких грамотрицательных палочек с закругленными концами, вплоть до кокковидных, окруженных капсулой.

У культур с типичными для A. pleuropneumoniae признаками изучают ферментативные свойства. Возбудитель выделяет уреазу, щелочную фосфатазу, ДПН-зависимый (Первый биовар), разла­гает с образованием кислоты без газа ксилозу, маннит, не утили­зирует сорбит, салицин, мелибиозу, цитраты, не образует индол.

Известны 12 сероваров возбудителя. При необходимости уста­навливают серовариантную принадлежность культуры в РДП, пробирочной РА.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Описать культуральные свойства P. multocida, Н. parasuis, A. pleuropneumoniae.

2. Приготовить мазки из культур P. nultocida, Н. parasuis, A. pleuropneumoniae, окрасить по Граму, Гинсу, промикроскопировать, зарисовать.

3. Изучить ферментативные свойства P. multocida, Н. parasuis, A. pleuropneumoniae и методы определения сероваров пастерелл (демонстрация).

4. Провести бактериологическое исследование трупов мышей, зараженных P. multocida.

 

Контрольные вопросы

1. Каковы морфологические и тинкториальные свойства возбудителей пасте-реллеза, гемофилезного полисерозита и актинобациллезной плевропневмонии?

2. Каковы ферментативные свойства P. multocida, Н. parasuis, A. pleuropneu­moniae?

3. Какими методами определяют ДПН-зависимость Н. parasuis и A. pleuropneu­moniae?

4. Какими методами определяют серовары P. multocida?

5. Какие выпускают противопастереллезные биопрепараты?